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    復(fù)蘇凍存細胞實驗

    發(fā)布時間: 2022-12-06  點擊次數(shù): 921次

    原理

    快速復(fù)蘇細胞,緩慢稀釋,以高細胞密度重新接種。


    材料與儀器


    步驟

    材料

    無菌

    培養(yǎng)瓶(如果需要離心時)

    生長培養(yǎng)基

    吸量管,1ml,10ml

    注射器和19號針頭(如果你使用玻璃凍存管)

    非滅菌

    保護性手套和面罩

    37℃無菌水,10cm深,盛于清潔、用乙醇擦拭過的帶蓋的水桶中

    鑷子

    70%乙醇

    棉簽

    1%萘黑(酰胺黑)或0.4%臺盼藍

    操作步驟

    1.檢查凍存目錄,確定將要復(fù)蘇的凍存管的位置

    2.收集所有材料,準備培養(yǎng)基,標記培養(yǎng)瓶

    3.從凍存罐中取出凍存管,檢查標簽,確定是否是所需要的凍存管,若小管未浸沒在液氮中,將小管放入塑料除菌水桶內(nèi)37℃的燒杯中。盡可能避免水沒過官帽,因為會增加污染的機會。

    安全提示

    將凍存管從液氮中取出時,必須穿實驗衣,戴手套。若凍存管浸沒在液氮中,則必須待面罩或護目鏡,也必須穿實驗衣戴手套。儲存在液氮中的凍存管,包括塑料小管都可能吸入液氮,復(fù)蘇時將可能發(fā)生劇烈爆炸。該種情況下,必須使用帶蓋的塑料水桶進行復(fù)蘇,以控制-爆-炸。

    4.當凍存管復(fù)蘇時,再次檢查標簽以確定為所需的細胞;隨后用70%乙醇徹-底擦洗凍存管,然后在超凈工作臺內(nèi)打開凍存管,

    5.用1ml吸管將凍存管內(nèi)含物轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶中。

    6.將培養(yǎng)基緩慢的加至細胞懸液中:以每2min 10ml的速率進行滴加。開始時逐滴加入,然后可加快,逐漸稀釋細胞和細胞保護劑。

    對于需要通過離心去除細胞保護劑的細胞:

    (a)按照步驟6,在離心管或常規(guī)容器內(nèi)緩慢稀釋細胞。

    (b)100g離心2min。

    (c)棄去含有細胞保護劑的上清培養(yǎng)液。

    (d)以新鮮培養(yǎng)基重新懸浮細胞。

    (e)接種入培養(yǎng)瓶。

    7.凍存管內(nèi)殘留物可用萘黑或臺盼藍染色,以測定細胞的存活率。

    8.24h后檢查:

    (a)對于貼壁單層細胞,依據(jù)預(yù)測密度(個細胞/cm2)的細胞照片,確認細胞是否貼壁,估計細胞存活率。

    (b)對于懸浮生長的細胞,檢查外觀(清晰的細胞質(zhì),缺乏細胞顆粒),稀釋至常規(guī)的接種濃度。若進行細胞技術(shù),并估計細胞存活率后,接種濃度可能更精確,這種情況下, 可以將細胞稀釋至常規(guī)存活細胞接種濃度。

    注意事項


    1. 將凍存管從液氮中取出時,必須穿實驗衣,戴手套。若凍存管浸沒在液氮中,則必須待面罩或護目鏡,也必須穿實驗衣戴手套。儲存在液氮中的凍存管,包括塑料小管都可能吸入液氮,復(fù)蘇時將可能發(fā)生劇烈爆炸。該種情況下,必須使用帶蓋的塑料水桶進行復(fù)蘇,以控制-爆-炸。


    2. 塑料凍存管在使用前要仔細檢查,以防管壁破裂或螺口不配套造成密封 不嚴。


    3. 用DMSO作為凍存保護劑時,用前應(yīng)先將凍存液在4℃預(yù)冷,解凍后應(yīng)馬 上洗去保護劑。


    常見問題


    1. 檢查細胞活率。用1ml培養(yǎng)液重懸細胞,臺盼藍染料排除法檢查細胞存活率。


    2. DMSO有-劇-毒,使用時要特別注意。此外,在凍存前越晚加入細胞越好,解凍后要盡快除去,以避免對細胞的毒害。


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